Identificación de drogas que inhiben la funcionalidad de proteínas de unión al ARN en tripanosomátidos

Autores/as

  • Analía Gabriela Níttolo Universidad Nacional de La Matanza, Departamento de Ciencias de la Salud, San Justo, Argentina https://orcid.org/0000-0003-0389-273X
  • María Clara Corso Instituto de Investigaciones Biotecnológicas, Universidad Nacional de San Martín (UNSAM) – Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas (CONICET). Escuela de Bio y Nanotecnologías (EByN), Universidad Nacional de San Martín. https://orcid.org/0000-0002-9212-3483
  • Gabriela Vanesa Levy Instituto de Investigaciones Biotecnológicas, Universidad Nacional de San Martín (UNSAM) – Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas (CONICET). Escuela de Bio y Nanotecnologías (EByN), Universidad Nacional de San Martín. https://orcid.org/0000-0002-7638-3509

DOI:

https://doi.org/10.54789/rs.v3i1.32

Palabras clave:

Trypanosoma cruzi, Trypanosoma brucei, proteínas de unión a ARN, reposicionamiento de drogas, daunorrubicina, concentración 50 inhibidora

Resumen

Trypanosoma cruzi y Trypanosoma brucei causan la enfermedad de Chagas y la enfermedad del sueño, respectivamente. No existen vacunas y los tratamientos disponibles son poco efectivos. El estudio de proteínas relevantes para el parásito representa blancos terapéuticos prometedores. Considerando a la proteína de unión de ARN TbRRM1 como blanco, se propone a la daunorrubicina como compuesto terapéutico y se evalúa su efectividad en la sobrevida de T. brucei.

Citas

Schmunis GA. Epidemiology of Chagas disease in non-endemic countries: the role of international migration. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2007;102 Suppl 1: 75–85.

Lander N, Chiurillo MA, Storey M, Vercesi AE, Docampo R. CRISPR/Cas9-mediated endogenous C-terminal Tagging of Trypanosoma cruzi Genes Reveals the Acidocalcisome Localization of the Inositol 1,4,5-Trisphosphate Receptor. J Biol Chem. 2016;291:25505–25515.

Website. Available: OPS/OMS. Encuentro Nacional de Chagas: Argentina actualiza estrategia para lograr la eliminación de la transmisión. 2019. Disponible en: https://www.paho.org/arg/index.php?option=com_content&view=article&id=10343:encuentro-nacional-de-chagas-argentina-actualiza-estrategia-para-lograr-la-eliminacion-de-la-transmision&Itemid=226

Brun R, Blum J. Human African trypanosomiasis. Infect Dis Clin North Am. 2012;26:261–273.

Steverding D. The development of drugs for treatment of sleeping sickness: a historical review. Parasit Vectors. 2010;3(1):15. doi: 10.1186/1756-3305-3-15

De Gaudenzi JG, Noé G, Campo VA, Frasch AC, Cassola A. Gene expression regulation in trypanosomatids. Docampo R, editor. Essays Biochem. 2011;51:31-46. doi: 10.1042/bse0510031

Clayton C, Shapira M. Post-transcriptional regulation of gene expression in trypanosomes and leishmanias. Mol Biochem Parasitol. 2007;156(2):93-101. doi:10.1016/j.molbiopara.2007.07.007

Stanne TM, Rudenko G. Active VSG Expression Sites in Trypanosoma brucei Are Depleted of Nucleosomes. Eukaryot Cell. enero de 2010;9(1):136-47.

Wirtz E, Leal S, Ochatt C, Cross GA. A tightly regulated inducible expression system for conditional gene knock-outs and dominant-negative genetics in Trypanosoma brucei. Mol Biochem Parasitol. 1999;99: 89–101.

Rolón M, Vega C, Escario JA, Gómez-Barrio A. Development of resazurin microtiter assay for drug sensibility testing of Trypanosoma cruzi epimastigotes. Parasitol Res. 2006;99: 103–107.

Descargas

Publicado

2024-06-01

Cómo citar

Níttolo, A. G., Corso, M. C., & Levy, G. V. (2024). Identificación de drogas que inhiben la funcionalidad de proteínas de unión al ARN en tripanosomátidos. ReDSal, 3(1), 35–40. https://doi.org/10.54789/rs.v3i1.32

Número

Vol. 3 Núm. 1 (2024): Revista de Investigaciones del Departamento de Ciencias de la Salud

Sección

Comunicación Breve/Relato de Experiencias

Licencia

Derechos de autor 2024 ReDSal

Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.